Preparación de sangre en fresco. 6/11/14

La observación de las muestras sin teñir permiten evitar los efectos secundarios de la tinción, como pueden ser la coagulación de las proteínas o la solubilización de los hidratos de carbono y grasas.

De este modo es posible visualizar la estructura natural de las células, o los cambios estructurales en procesos patológicos.

• Muestra utilizada.
  Sangre capilar o sangre venosa anticuagulada.

• Material utilizado.

• Microscópio óptico.
• Portas y cubres.
• Alcohol y algodón.
• Lancetas.
• Vasos de precipitado.

• Secuenciación y procedimiento.

1. Una vez reunido todo el material y limpiado los portas, cogemos el algodón y el alcohol y lo pasamos por el dedo en el que vayamos a realizar la punción con la lanceta.
2. Dejamos secar, una vez esto realizamos la punción y depositamos la gota de sangre sobre el cubreobjetos.
3. Invertir inmediatamente el cubreobjetos, apoyándolo sobre un portaobjetos, permitiendo que la sangre se extienda formando una pelicula delgada.
4. Observamos la preparación al microscópio con el objetivo de 40x.

• Descripción y registro de resultados.

Los glóbulos rojos frescos son de color anaranjados verdosos sin movilidad intrínseca. Pueden observarse aislados o agrupados en pilas de monedas, que son mas frecuentes en ciertas patologías de las proteínas plasmáticas.

los glóbulos blancos o leucocitos vivos si son células móviles, ya que tienen un extremo activo que produce pseudopodos y facilita el desplazamiento. Los que tienen esta capacidad mas desarrollada son los linfocitos.

Las plaquetas no tienen movilidad y tienden a agruparse formando acúmulos.

Actividades

1. ¿ Qué tipo de colorante empleamos aquí?
   Ninguno.
   2. ¿Qué ventajas posee esta técnica?
   Que se pueden observar las células sanguíneas en su estado natural.
   3. ¿Qué muestras podemos emplear?
   Muestras de sangre capilar.